арбуз

В настоящее время функциональные продукты питания и нутрицевтики приобретают огромное значение в профилактике различных заболеваний с помощью модуля диетического режима. В рационе, основанном на фруктах и ​​овощах, используется ряд биоактивных компонентов, особенно фитохимических веществ, направленных на лечение опасных для жизни заболеваний. В этом контексте ликопин является тщательно изученным антиоксидантом, потенциально присутствующим в арбузе, помидоре, розовой гуаве и т. Д. Арбуз является одним из уникальных источников легко доступного цис-изомерный ликопин. Характерный аромат арбуза придают жирные кислоты со средней и короткой цепью, а также гераниаль, ß-ионон и нераль. Его потребление возросло благодаря богатому питательному составу и сопутствующей пользе для здоровья. Он эффективен в снижении распространенности рака, сердечно-сосудистых заболеваний, диабета и заболеваний желтого пятна. Структурные характеристики, физико-химические свойства и терапевтические эффекты ликопина находятся в центре внимания рукописи. Тем не менее, необходимы дальнейшие научные исследования, чтобы изучить потенциал ликопина арбуза в укреплении здоровья.

арбуз польза для здоровья

Арбуз ( Citrullus lanatus ), который ботанически считается фруктом, принадлежит к семейству Cucurbitaceae [1]. Он произрастает в пустыне Калахари в Африке, но в настоящее время его также выращивают в тропических регионах мира. На страницах истории его первый урожай был задокументирован 5000 лет назад в Египте, который позже распространился на другие части мира. В настоящее время Китай является ведущим производителем, за ним следуют Турция, США, Иран и Республика Корея (Zohary and Hopf, 2000 [ 2 ];  Naz et al., 2013 [3 ]). Арбуз — ценный источник природных антиоксидантов, особенно ликопина, аскорбиновой кислоты и цитрулина. Эти функциональные ингредиенты действуют как защита от хронических проблем со здоровьем, таких как рост рака и сердечно-сосудистые заболевания (Zhang and Hamauzu, 2004 [4]; Omoni and Aluko, 2005 [ 5 ]; Fenko et al., 2009 [ 6 ]). Ликопин характеризуется характерным красным цветом фруктов и овощей (Mutanen and Pajari, 2011 [ 7 ]).

Пищевая ценность

Порция 80 г обеспечивает:

25 ккал / 106 кДж

0,4 г белка

0,2 г жира

5,7 г углеводов

0,1 г клетчатки

80 мг калия

93 мкг каротина

6 мг витамина С

Арбуз 5 основных преимуществ для здоровья

арбуз польза

Арбуз поддерживает гидратацию.

Поддержание гидратации имеет важное значение для здоровья[8], при этом даже умеренный уровень обезвоживания может проявляться в виде усталости, головных болей, мышечных спазмов и возможных проблем с артериальным давлением. Арбуз в значительной степени состоит из воды (92%), при этом 20% наших потребностей в воде мы получаем из пищи, в том числе арбуз может внести полезный вклад, особенно для пожилых людей, которые менее чувствительны к ощущению жажды[8] .

Арбуз может поддерживать контроль веса.

Благодаря высокому содержанию воды, арбуз имеет низкую калорийность, это означает, что большой ломтик арбуза имеет относительно небольшую калорийность. Употребление в пищу подобных продуктов, одновременно сытных, но с низким содержанием калорий, способствует сытости и снижает аппетит[9] .

Арбуз может поддерживать здоровье кожи и глаз.

Розово-красная мякоть арбуза говорит нам о том, что он богат соединениями, называемыми каротиноидами, включая  бета-каротин , который мы превращаем в витамин А. Часто называемый провитамином А, бета-каротином, помогает сохранить здоровье глаз[10] и кожи [10].

Арбуз ( Citrullus lanatus ) ассоциируется с огурцом, тыквой, тыквой и тыквами; принадлежат к семейству Cucurbitaceae (Edwards et al., 2003 [13]). Плоды этого растения являются основной потребляемой частью, и различия в характеристиках роста определяют качество их конечного использования (Maynard, 2001 [ 11 ]; Oms-Oliu et al., 2009 [ 12]). Принимая во внимание профиль питания, потребление 100 г арбуза обеспечивает 30 ккал. Он содержит почти 92% воды и 7,55% углеводов, из которых 6,2% составляют сахара и 0,4% пищевых волокон. Он обогащен каротиноидами, витамином С, цитруллином, каротиноидами и флавоноидами, не содержит жиров и холестерина, поэтому считается низкокалорийным фруктом (Leskovar et al., 2004 [ 14 Bruton et al., 2009 [ 15 ]). Кроме того, арбуз является богатым источником ß-каротина, который действует как антиоксидант и предшественник витамина А.

Арбуз может поддерживать кровяное давление и выполнять упражнения.

Недавние результаты показывают, что фитонутриенты, содержащиеся в арбузе, в частности L-цитруллин, могут помочь  снизить кровяное давление и улучшить физическую работоспособность у молодых здоровых людей[16].

Помимо ликопина, он является источником витаминов группы B, особенно B 1 и B 6 , а также минералов, таких как калий и магний (Huh et al., 2008 [ 17 ]). Арбуз содержит фенольные соединения, вполне сопоставимые с таковыми из других фруктов (Kaur and Kapoor, 2001 [ 18 ]; Jaskani et al., 2005 [19 ]). Это недорогой и питательный источник, доступный для всех социально-экономических групп Пакистана в течение всего летнего сезона. Его потребление зависит от ряда факторов, например.доступность, доход, возраст, пол, расовые и этнические нормы. В этом контексте потребление на душу населения в азиатских сообществах почти в 3 раза больше по сравнению с другими частями земного шара (Dermesonlouoglou et al., 2007 [ 20 ]).

 

Арбуз богатый источник ликопина.

Другой каротиноид, содержащийся в арбузе, — это ликопин, на самом деле тип ликопина, содержащийся в арбузе, более доступен[21] для нас, что делает арбуз особенно полезным источником. Ликопину уделялось много внимания, и он считается эффективным в снижении риска некоторых видов рака, поддержании здоровья сердца и глаз и уменьшении возможности хронических состояний, таких как диабет 2 типа[21] .

Противораковые свойста арбуза основаны не большом количестве легкоусвояемого Ликопина

 

Летучие вещества, вносящие аромат

В различных фруктах, цветах и ​​специях однотонники и норизопреноиды (апокаротенали) являются ключевыми соединениями, производящими характерный запах. В случае арбуза характерный аромат придают жирные кислоты со средней и короткой цепью, а также гераниаль, ß-ионон и нераль, которые входят в состав норизопреноидных и монотерпеновых соединений. Однако вряд ли сложные эфиры отсутствуют, как в большинстве фруктов, например, в клубнике, банане, дыне и т. Д. (Tadmor et al., 2005 [ 26 ]). Доказательства in vitro подтверждают, что фруктовые запахи представляют собой каротиноиды, разложенные под действием липоксигеназ, пероксидаз и диоксигеназ. Однако также интересно знать, что цитраль, который представляет собой ароматическое соединение лимонной травы, лимонного базилика и различных растений с ароматом лимона, представляет собой комбинацию цис-и транс- монотерпеновый, нераля и гераниал. Собранная информация подтверждает его биосинтез в фруктах, богатых ликопином, таких как арбуз и томат (Micol et al., 2007 [27 ]).

Арбуз  потенциальный источник ликопина

Раньше только помидор и продукты из него считались потенциальными источниками ликопина, но теперь есть доказанные факты, что арбуз также содержит заметное количество цис- сконфигурированного ликопина. Таким образом, потребители постепенно переключаются на арбуз и родственные ему продукты, поскольку заботятся о своем здоровье. Тем не менее количество ликопина варьируется в зависимости от сорта и условий выращивания (Fish and Davis, 2003 [ 22 ]). В целом, ликопин колеблется от 2,30 до 7,20 мг / 100 г сырой массы основания, присутствующего в клетке в кристаллической форме (Huh et al., 2008 [ 17 ]; Chaoensiri et al., 2009 [ 23 ]; Artes-Henandez et al., 2010 [24]). Что еще более интересно, содержание ликопина в арбузе с красной мякотью почти на 40% выше, чем в томате.т.е. 4,81 и 3,03 мг / 100 г соответственно. Однако желто-оранжевый и желтый цвет мякоти имеют относительно меньшее содержание ликопина, т.е. 3,68 и 2,51 мг / 100 г, соответственно (Jaskani, 2005 [ 19 ]; Choudhary et al., 2009 [ 25 ]). В томатах ликопин доступен в относительно больших количествах после термической обработки из-за разрушения белково-каротиноидного комплекса. Напротив, ликопин из арбуза поступает в организм человека сразу после употребления (Edwards et al., 2003 [1]; Perkins-Veaize and Collins, 2004 [ 28 ]; Jaskani et al., 2006 [ 29 ]; Saftner et al., 2003 [ 1 ]; Perkins-Veaize and Collins, 2004 [28 ]; Jaskani et al., 2006 [ 29 ]; Saftner et al. др., 2007 [ 30]).

Условия хранения также кардинальны, что существенно влияет на концентрацию ликопина, фенолов и содержание витамина С. Более высокое соотношение ликопина и каротина в арбузе, т.е. 1:12, обеспечивает замечательную антиоксидантную способность (Mort et al., 2008 [31]). Из-за этой специфической характеристики продукты с высоким содержанием ликопина относят к функциональным продуктам (Shi and Maguer, 2000 [ 32 ]; Collins et al., 2005 [ 33 ]; Jiang and Lin, 2007 [ 35]; Davis et al., 2008 [ 34).

Ликопин — это яркий тетрапеновый каротиноид с молекулярной формулой C 40 H 56 . и содержит 11 сопряженных и 2 неконъюгированных двойных связей (Fish et al., 2002 [ 36 ]). Это ациклический изомер и аналог β-каротина с открытой цепью, который подвергается цис-транс- изомеризации при взаимодействии со светом, температурой и химическими веществами (Ollanketo et al., 2001 [ 37 ]). Подавляющее большинство исследований продемонстрировало, что сыворотка крови человека содержит как цис-, так и транс- изомерные формы ликопина, тогда как растения имеют только транс-конфигурацию, за исключением арбуза (Klipstein-Grobusch et al., 2000 [ 38]; Tadmor et al., 2005 [ 26 ]). Некоторые изомерные формы ликопина также изображены на рисунке 2.. Среди различных конфигураций 5- цис- форма более устойчива с сильным антиоксидантным потенциалом по сравнению с полностью транс, 7- цис , 9- цис , 11- цис , 13- цис и 15- цис (Arab and Steck, 2000 [ 39 ]) ; Chasse et al., 2001 [ 40 ]; Lewinsohn et al., 2005 [ 41 ]; Alquézar et al., 2009 [ 42 ]).

 

 

В многочисленных публикациях сообщается, что количество ликопина значительно зависит от времени хранения и температуры арбуза. Было замечено, что содержание ликопина при температуре хранения 5 ° C варьировалось от 7,8 до 8,1 мг / 100 г, которое увеличивалось до 8,1–12,7 мг / 100 г при 20 ° C (Mokbe, 2005 [ 43]; Choudhary et al. , 2009 [ 25]). Данные различных исследований показали тенденцию к увеличению содержания ликопина и β-каротина в арбузе при более высоких температурах хранения. Было высказано предположение, что пути выработки ферментов каротиноидов чувствительны к температуре (Oms-Oliu et al., 2009 [44]. Подробные сведения о физических и противораковых свойствах ликопина приведены  на страничке ликопин.

Защита сердечно-сосудистой системы с помощью арбуза.

Сердечно-сосудистые заболевания — основная причина роста смертности во всем мире. Кроме того, стоимость лечения сердечно-сосудистых заболеваний высока. Следовательно, адаптация образа жизни с помощью диеты, благоприятной для сердечно-сосудистых заболеваний, снизит факторы риска, связанные с заболеванием. Фрукты и овощи могут бороться с негативными последствиями сердечно-сосудистых заболеваний. l- цитруллин и l- аргинин обладают способностью снимать воспаление и окислительный стресс [ 45 , 46]. Однако прямой прием l- цитруллина и l- аргинина может привести к желудочно-кишечному дискомфорту, таким как тошнота и диарея [ 47 , 48 ]. Поэтому употребление фруктов, богатыхl -цитруллин (предшественник l- аргинина, незаменимой аминокислоты для синтеза белка), такого как арбуз, важен для получения необходимого питания. Добавление цельного арбуза в виде порошка улучшило липидный профиль, антиоксидантный статус и противовоспалительные свойства у крыс с высоким содержанием жира [ 49 ]. Более того, употребление арбуза регулирует экспрессию генов, связанных с метаболизмом липидов [ 49 ]. Подробно увеличение арбуза и л.-аргинин усиливает регуляцию экспрессии печеночных генов эндотелиальной синтазы оксида азота. Оксид азота (NO) является повсеместной сигнальной молекулой, жизненно важной для расслабления кровеносных сосудов, а также снижает атеросклероз, влияя на метаболизм липидов [ 49 , 50 , 51]. С другой стороны, добавка арбуза подавляла гены, участвующие в метаболизме липидов, такие как синтаза жирных кислот (FAS), 3-гидрокси-3-метил-глутарил-коА-редуктаза (HMGCR), белок, связывающий регуляторный элемент стерола (SERB) 1, SERB 2. , циклооксигеназа-2 (COX2) и ядерный фактор-kB (NF-κB) у крыс [49]. Среди перечисленных выше ферментов FAS играет важную роль в denovo синтезе жирных кислот, тогда как HMGCR действует как ограничивающий скорость фермент в синтезе холестерина [ 52 ]. Сходным образом и SREBP-1, и SREBP-2 регулируют транскрипцию генов, участвующих в синтезе жирных кислот и холестерина соответственно [ 53 ].

Окислительный стресс и воспаление являются ключевыми факторами в возникновении атеросклероза. Уровни сывороточного С-реактивного белка используются как индикаторы системного воспаления, которое приводит к сердечной дисфункции [ 53 — 55 ]. Употребление арбуза значительно снижает уровень С-реактивного белка в сыворотке крыс с высоким содержанием жира [ 56 ]. Кроме того, арбуз подавляет экспрессию фермента Цокс-2, ответственного за синтез провоспалительных простагландинов. Кроме того, Hong et al. [ 56], проиллюстрировал, что добавка арбуза проявляет аналогичный механизм действия нестероидных противовоспалительных препаратов, который подавляет активность Цокс-2 и снижает воспалительную реакцию. Недавнее исследование продемонстрировало способность арбуза снижать факторы риска сердечно-сосудистых заболеваний у человека [ 57 , 58]. По мнению Коннолли и соавт. [ 58], ежедневное употребление арбуза в течение четырех недель привело к значительному снижению массы тела, индекса массы тела, соотношения талии и бедер и артериального давления. Кроме того, в отчете также утверждается, что добавка арбуза снижает уровень триглицеридов, холестерина липопротеинов низкой плотности, реактивного вещества тиобарбитовой кислоты и увеличивает антиоксидантную способность у взрослых с ожирением [ 58 ]. В целом очевидно, что регулярное употребление арбуза снижает факторы риска, связанные с хроническими заболеваниями, такими как сердечно-сосудистые заболевания.

3. Арбуз как функциональная пища при ожирении и антидиабетическая закуска.

Ожирение — тревожная проблема общественного здравоохранения во всем мире, связанная с серьезными нарушениями обмена веществ, включая диабет и болезни, связанные с образом жизни. Современный образ жизни и нездоровые пищевые привычки, включая несколько фаст-фудов и обработанные продукты с более высоким уровнем сахара в обычном рационе, являются основными факторами, способствующими ожирению. Согласно Национальному статистическому отчету о диабетике (2020 г.), опубликованному Центрами по контролю и профилактике заболеваний (CDC), 45,8% взрослых в США страдают ожирением, из которых 10,5% населения страдают диабетом [ 59]. Диабет можно разделить на два типа (1 и 2) в зависимости от этиопатогенеза. Диабет 1 типа характеризуется разрушением В-клеток поджелудочной железы из-за аутоиммунного ответа организма, приводящего к дефициту инсулина, тогда как диабет 2 типа является наиболее распространенной формой диабета, связанной с резистентностью к инсулину [ 60 ]. Хроническая гипергликемия в результате диабета приводит к ретинопатии, невропатии, нефропатии, заболеваниям периферических сосудов, цереброваскулярным заболеваниям и ишемической болезни сердца [ 61 , 62 , 63 ]. Однако уровень окислительного стресса и воспалительные реакции в организме играют жизненно важную роль в развитии вышеупомянутых осложнений.

Ярким симптомом инсулиннезависимого диабета является снижение синтеза и биодоступности эндотелиального NO, повышение концентрации глюкозы в плазме, свободных жирных кислот, гомоцистеина и метиларгининов [ 64 ]. Многочисленные исследования показывают, что регуляция окисления энергетических субстратов, чувствительность к инсулину и гемодинамика находятся под влиянием NO у людей [ 65 ]. При синтезе NO l- аргинин действует как предшественник, который превращается тетрагидробиопетрин (BH 4 ) -зависимой NO-синтазой [ 69 ]. На основании результатов различных исследований in vivo и in vitro было продемонстрировано, что потребление l- аргинина с пищей снижает уровень глюкозы у крыс с диабетом и ожирением [66 , 67 , 68 ]. Кроме того, l- аргинин усиливал реактивность сосудов на животных моделях [ 64 , 70 , 71 ] и у пациентов с гиперхолестерином [ 72 ]. Таким образом, благодаря многочисленным преимуществам l- аргинина для здоровья, он рекомендован для снижения риска ожирения и диабета. Однако прямое потребление l- аргинина вызывает проблемы с желудочно-кишечным трактом, поэтому альтернативой стали диеты, обогащенные l- аргинином.

Употребление арбуза значительно увеличивает уровень l- аргинина в плазме. Согласно Wu et al. [ 73 ], добавление арбузного сока крысам с диабетом Цукера (широко используемая модель на животных для инсулинозависимого диабета) повышало уровни l- аргинина, уменьшало количество глюкозы, свободных жирных кислот, гомоцистеина и метиларгининов [ 73 ] . С другой стороны, он увеличивал активность GTP циклогидроксилазы-1 и уровни тетрагидробиоптерина в сердце и расслабление сосудов, опосредованное ацетилхолином. Кроме того, Wu et al. [ 73 ] рекомендовали употребление сока выжимок арбуза в качестве функциональной пищи для борьбы с диабетом и ожирением, основываясь на своих результатах на животных моделях.

У людей пероральный прием арбузного сока может выступать в качестве эффективной альтернативы добавкам аргинина. Сок арбуза эффективно помогает регулировать обмен веществ в организме и усиливает сердечно-сосудистую систему и иммунный ответ у людей. Исследование Figueroa et al. [ 75 ] у тучных взрослых среднего возраста с предгипертонией показали, что потребление арбуза улучшает артериальную функцию и снижает артериальное давление в лодыжках, плечевое артериальное давление и отражение сонных волн. Точно так же потребление арбуза вызывало реакцию сытости и снижало массу тела, индекс массы тела (ИМТ) и соотношение талии к бедрам у взрослых с ожирением. Кроме того, Lum et al. [ 74] предположил, что арбуз может эффективно снизить аппетит и помочь в регулировании веса по сравнению с обычными рафинированными углеводными закусками.

4. Свойства арбуза против язвенного колита.

Язвенный колит — одно из широко распространенных воспалительных заболеваний кишечника, вызывающих воспаление слизистой оболочки всей системы кишечника [ 76 ]. Характерной чертой язвенного колита является разрушение бокаловидных клеток, крипт и развитие язв [ 77]. Кроме того, язвенный колит на хронической стадии может перерасти в смертельный колоректальный рак, который является вторым по значимости видом рака с высоким уровнем смертности [ 77 ]. Помимо колоректального рака, язвенный колит также связан с началом других родственных заболеваний, таких как ревматоидный артрит, анкилозирующий спондилит и псориаз [ 77]. Снижение всасывания л.-аргинин колоноцитами — один из симптомов язвенного колита [ 80 , 81 ]. Согласно Coburn et al., [ 82 ] пациенты с язвенным колитом имели меньшее содержание l- аргинина, что влияло на гистологию толстой кишки и нормальную проницаемость слизистой оболочки. Кроме того, добавление l- аргинина облегчало симптомы язвенного колита за счет увеличения активности антиоксидантов, снижения уровней провоспалительных цитокинов, а также за счет улучшения других родственных клинических параметров [ 83 , 84 ]. Содержание l- цитруллина, предшественника l-аргинин в арбузе может помочь в лечении язвенного колита. Недавнее исследование Hong et al. [ 56] продемонстрировали, что добавка арбуза опосредует улучшение микроархитектуры крипт толстой кишки, клеточной кинетики и повышение эндогенных уровней оксида азота. Hong et al. [ 56] предположили, что повышение уровня NO арбузом будет синергетически усиливать экспрессию рецептора-γ, активируемого пролифератором пероксисом (PPAR-γ), что, в свою очередь, снижает воспаление и окислительный стресс. Предыдущие исследования предполагали прямое влияние NO и l- аргинина на повышающую регуляцию PPAR-γ, тогда как язвенный колит приводит к снижению уровней PPAR-γ [ 85 , 86]. Важные ферменты, такие как COX-2, iNOS и NF-κB, участвующие в генерации активных форм кислорода, ингибируются PPAR-γ; с другой стороны, активность антиоксидантных ферментов усиливается PPAR-γ [ 87 ].

Кроме того, увеличение количества арбуза снизило уровни циклина D1, жизненно важного белка в сигнальном пути Wnt у мышей с язвенным колитом, получавших пищу с высоким содержанием жира [ 56]. Повышенная экспрессия циклина D1 широко наблюдается при язвенном колите и канцерогенезе толстой кишки [ 57 ]. Сигнальный путь Wnt запускает клеточную пролиферацию, а не клеточную дифференцировку, что приводит к канцерогенезу [ 57 ]. Предыдущие сообщения предполагали, что эндогенное NO-опосредованное ингибирование регуляции Cyclin D1 через путь β-catenin [ 57 , 88 ], следовательно, повышение уровня NO арбузом может снизить экспрессию Cyclin D1.

Одним из основных факторов, увеличивающих патогенез язвенного колита, является образование избыточных активных форм кислорода, что приводит к окислительному стрессу, который является летальным для макромолекулярных компонентов клеток, а также приводит к повреждению ДНК [ 89]. В частности, окислительный стресс, вызывающий повреждение ДНК, способствует развитию канцерогенеза. Например, образование 8-гидроксидезоксигуанозина (8-OHdG), окисленного производного дезоксигуанозина, образованного реакцией между реактивным гидроксильным радикалом и нуклеиновым основанием ДНК, способствует возникновению рака прямой кишки за счет подавления генов-супрессоров опухоли [ 90 ,91]. Hong et al. [ 56] идентифицировали повышенные уровни 8-OHdG у крыс, получавших DSS, тогда как добавление арбуза уменьшало содержание 8-OHdG. Обильные антиоксидантные свойства арбуза могут быть ответственны за подавление уровней 8-OHdG за счет уменьшения окислительного стресса и, таким образом, защиты ДНК от повреждений.

Противораковые свойства арбуза.

Рак — это ужасное заболевание, от которого во многих странах мира высока смертность. Связь между активными компонентами диеты и экспрессией генов нескольких метаболических путей может влиять на молекулярный механизм канцерогенеза в биологической системе. Например, ликопин, активный компонент арбуза, может влиять на модуляцию развития рака, подавляя мутации ДНК и действуя против метастазирования опухоли [ 92 ]. По данным Nahum et al. [ 92], ликопин вызывает модуляцию аппарата клеточного цикла, в частности, за счет ингибирования фазы G1 при раке груди и эндометрия человека. Введение ликопина привело к снижению активности циклин-зависимой киназы (CDK) 1 и 3 в раковых клетках. Кроме того, антиоксидантное свойство ликопина снижает окислительный стресс и способствует антипролиферативному действию против раковых клеток. Несколько исследований продемонстрировали противораковый потенциал ликопина in vitro и in vivo [ 93]. Однако глубокое молекулярное обоснование опосредованной ликопином регуляции взаимодействия между генами все еще изучается.

Среди видов рака рак толстой кишки — второй по значимости рак в мире, поражающий людей. Рак толстой кишки может возникнуть из-за нарушения баланса между клеточной пролиферацией и запрограммированной гибелью клеток (апоптозом). Однако исследования показали, что правильное диетическое вмешательство может предотвратить большинство случаев рака толстой кишки. Добавление арбуза крысам с раком толстой кишки уменьшало клеточную пролиферацию, но не наблюдалось значительного воздействия на апоптоз [ 94]. Опухолевые свойства арбуза могут быть обусловлены различными факторами, но наиболее важным из них может быть наличие большого количества l-цитруллина и его функция в синтезе эндотелиального оксида азота (NO). По данным Glen et al. [ 95], добавление арбузного порошка в рацион самцов крыс Sprague-Dawley, вызванное раком толстой кишки, снизило риски за счет уменьшения образования аберрантных очагов крипт за счет уменьшения окислительных повреждений и воспаления ДНК. Кроме того, увеличение выработки эндогенного оксида азота добавляло облегчение раковых эффектов, а добавка арбуза также модулировала экспрессию ферментов репарации ДНК для борьбы с раком.

У женщин рак груди и шейки матки — два наиболее распространенных вида рака с высокой летальностью. Антипролиферативные эффекты экстрактов листьев арбуза были исследованы на клеточных линиях рака груди и шейки матки [96 ]. Экстракты листьев шести сортов арбуза были протестированы на клеточных линиях рака шейки матки (C33A, HeLa и SiHa) и клеточных линиях аденокарциномы груди (MDA-MB-231 и MCF-7) [ 96]. Анализ МТТ in vitro и микроскопическое наблюдение клеток подтвердили антипролиферативное свойство экстрактов листьев арбуза в обеих линиях раковых клеток по сравнению с нормальными клетками. Однако клеточные линии рака шейки матки, в частности C33A, показали высокую чувствительность к экстрактам. Среди линий раковых клеток микроскопические наблюдения выявили уменьшение количества и размера клеток в линиях C33A, MCF-7 и MDA-MB-231 [ 96 ]. В отчете также говорится о том, что экстракты листьев арбуза обладают противораковыми свойствами, зависящими от сорта.

Лейкоз вызывается аномальным разрастанием клеток крови в костном мозге. Различные части арбуза обладают противораковым действием благодаря наличию жизненно важных фармацевтически ценных фитохимических веществ. Фитохимический «фитол», экстрагированный из проростков арбуза, ингибировал чрезмерную пролиферацию клеток линии Т-клеточного лейкоза человека Jurkat и эпителиальных клеток линии аденокарциномы легкого человека A549 — модель ксенотрансплантата на мышах [ 97]. Кроме того, молекулярный механизм, лежащий в основе гибели клеток, опосредованной фитолом, включает активацию межклеточных активных форм кислорода через НАДФН-оксидазу, что приводит к остановке клеточного цикла в S-фазе. Экспрессия жизненно важных белков, таких как циклин A, циклин D, митоген-активированная протеинкиназа (MAPK) и фосфатидилинозитол-3-киназа (PI3K) / протеинкиназа b (Akt), подавлялась, что приводило к остановке S-фазы [ 97 ]. Белок циклин A жизненно важен для синтеза молекул ДНК и продвижения S-фазы в клеточном цикле за счет связывания с белком Cdk2 [ 98 , 99]. Более того, переход G1 в S-фазу в клеточном цикле опосредуется циклином D; например, циклин D фосфорилирует белок-супрессор опухоли ретинобластомы путем стыковки непосредственно с Cdk4 или Cdk6 [ 100 , 101]. Более того, в отчете было высказано предположение, что регуляция белков циклина A и D опосредована АФК, которая предотвращает клеточный цикл в S-фазе [ 97 ]. Аналогичным образом, в нескольких сообщениях проиллюстрирована регуляция экспрессии циклинов A и D, опосредованная MAPK и PI3K / Akt [ 102 , 103 , 104 , 105 , 106]. И MAPK, и PI3K / Akt участвуют во многих функциях клеток, таких как пролиферация, движение, дифференцировка, удлинение, выживание, рост и смерть [ 107 ]. Однако механизм апоптоза не был существенно связан с гибелью клеток, индуцированной фитолом, в линиях раковых клеток. Сообщалось о подобных наблюдениях гибели клеток, не опосредованной апоптозом, в первую очередь вызванной межклеточными АФК в линиях раковых клеток фитохимическими веществами [108]. В целом вторичные метаболиты, присутствующие в тканях арбуза, могут эффективно снижать распространение раковых клеток. Дальнейшие исследования, связанные с идентификацией и извлечением потенциальных фитохимических веществ с эффективной противораковой активностью, могут помочь в поиске лекарств-кандидатов от нескольких ужасных видов рака. Употребление арбуза показало потенциальную пользу для здоровья от ряда опасных для жизни заболеваний. Фитохимические вещества, присутствующие в различных тканях арбуза, борются с вредным окислительным стрессом, а также влияют на жизненно важные метаболические пути. Большинство молекул, на которые нацелены фитохимические вещества арбуза, участвуют в различных метаболических сетях, поэтому необходимо детально изучить молекулярную рациональность, лежащую в основе облегчения заболевания арбузом, с учетом выделения активных компонентов в экстракте

Безопасен ли арбуз для всех?

Арбуз безопасен для большинства людей, однако есть небольшое количество людей, у которых может быть аллергия, хотя это бывает редко. Аллергия может возникнуть в результате перекрестной реактивности, при которой человек, страдающий аллергией на определенные виды пыльцы, такие как пыльца амброзии или травы, также может реагировать на арбуз.

Хотя некоторые аллергические реакции могут быть легкими, они также могут быть опасными для жизни, поэтому при появлении каких-либо признаков тяжелой аллергии, таких как затрудненное дыхание, проблемы с глотанием или речью, или чувство головокружения и обморока, следует обратиться за неотложной медицинской помощью.

 

источники и ссылки

  1. Edwards AJ, Vinyard BT, Wiley ER, Brown ED, Collins JK, Perkins-Veazie P, et al. Consumption of watermelon juice increases plasma concentrations of lycopene and β-carotene in humans. J Nutr. 2003;133:1043–1050. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12672916)
  2. «Domestication of plants in the Old World: The origin and spread of cultivated plants in
    West Asia, Europe and the Nile Valley.»(https://books.google.com.ua/books/about/Domestication_of_Plants_in_the_Old_World.html?id=C1H6_XWJS_gC&redir_esc=y)
  3. Shweta Nagal , Charanjit Kaur, Harshawardhan Choudhary, Jashbir Singh, Braj Bhushan Singh, K N Singh «Lycopene content, antioxidant capacity and colour attributes of selected watermelon (Citrullus lanatus (Thunb.) Mansfeld) cultivars grown in India»(https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/22716946/)
  4. Maria Leja , Iwona Kamińska, Maike Kramer, Anna Maksylewicz-Kaul, Dietmar Kammerer, Reinhold Carle, Rafal Baranski»The content of phenolic compounds and radical scavenging activity varies with carrot origin and root color»(https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23613033/)
  5. Adetayo O.OmoniRotimi E.Aluko «The anti-carcinogenic and anti-atherogenic effects of lycopene: a review»(https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0924224405000373)
  6. AnnaFenko Hendrik N.J.Schifferstein Tse-ChiaHuang Paul Hekkert «What makes products fresh: The smell or the colour?»(https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0950329309000251?via%3Dihub)
  7. Duilio Divisi , Sergio Di Tommaso, Salvatore Salvemini, Margherita Garramone, Roberto Crisci «Diet and cancer»(https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17172193/)
  8. Barry M Popkin , Kristen E D’Anci, Irwin H Rosenberg»Water, hydration, and health»(https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20646222/)
  9. Marta Stelmach-Mardas , Tomasz Rodacki , Justyna Dobrowolska-Iwanek , Anna Brzozowska,
    Jarosław Walkowiak, Agnieszka Wojtanowska-Krosniak, Paweł Zagrodzki, Angela Bechthold, Marcin Mardas, Heiner Boeing «Link between Food Energy Density and Body Weight Changes in Obese Adults»(https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27104562/)
  10. Silke K Schagen , Vasiliki A Zampeli, Evgenia Makrantonaki, Christos C Zouboulis «Discovering the link between nutrition and skin aging»(https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/23467449/)
  11. Maynard DN. Watermelons: characteristics, production, and marketing. Alexandria, VA:ASHS Press; 2001. (https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/20023058252)
  12. Oms-Oliu G, Odriozola-Serrano I, Soliva-Fortuny R, Martín-Belloso O. Use of Weibull distribution for describing kinetics of antioxidant potential changes in fresh-cut watermelon. J Food Eng. 2009;95:99–105. (https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0260877409002052)
  13. Edwards AJ, Vinyard BT, Wiley ER, Brown ED, Collins JK, Perkins-Veazie P, et al. Consumption of watermelon juice increases plasma concentrations of lycopene and β-carotene in humans. J Nutr. 2003;133:1043–1050. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12672916)
  14. Leskovar DI, Bang H, Crosby KM, Maness N, Franco JA, Perkins-Veazie P. Lycopene, carbohydrates, ascorbic acid and yield components of diploid and triploid watermelon cultivars are affected by deficit irrigation. J Hortic Sci Biotechnol. 2004;79:75–81. (https://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1080/14620316.2004.11511739)
  15.  Bruton BD, Fish WW, Roberts W, Popham TW. The influence of rootstock selection on fruit quality attributes of watermelon. Open Food Sci J. 2009;3:15–34. (https://pubag.nal.usda.gov/catalog/42037)
  16. Arturo Figueroa , Alexei Wong, Salvador J Jaime, Joaquin U Gonzales «Influence of L-citrulline and watermelon supplementation on vascular function and
    exercise performance»(https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/27749691/)
  17. Huh YC, Solmaz I, Sari N. Morphological characterization of Korean and Turkish watermelon germplasm. In: Pitrat M, editor. Cucurbitaceae. Proceedings of the IXth EUCARPIA meeting on genetics and breeding of Cucurbitaceae, Avignon (France), May 21-24th. 2008. pp. 327–333. (https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/20103041513)
  18. Kaur C, Kapoor HC. Antioxidants in fruits and vegetables – the millennium’s health. Int J Food Sci Technol. 2001;36:703–725.(https://ifst.onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1111/j.1365-2621.2001.00513.x)
  19. Jaskani MJ, Kwon SW, Kim DH. Comparative study on vegetative, reproductive and qualitative traits of seven diploid and tetraploid watermelon lines. Euphytica. 2005;145:259–268. (https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31623210/)
  20.  Dermesonlouoglou E, Giannakourou M, Taoukis P. Kinetic modelling of the quality degradation of frozen watermelon tissue: effect of the osmotic dehydration as a pretreatment. Int J Food Sci Technol. 2007;42:790–798. (https://ifst.onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1111/j.1365-2621.2006.01280.x)
  21. Ambreen Naz , Masood Sadiq Butt , Muhammad Tauseef Sultan , Mir Muhammad Nasir Qayyum , Rai Shahid Niaz  «Watermelon lycopene and allied health claims»(https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26417290/)
  22.  Fish WW, Davis AR. The effects of frozen storage conditions on lycopene stability in watermelon tissue. J Agric Food Chem. 2003;51:3582–3585. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12769528)
  23. Charoensiri R, Kongkachuichai R, Suknicom S, Sungpuag P. Beta-carotene, lycopene, and alpha-tocopherol contents of selected Thai fruits. Food Chem. 2009;113:202–207. (https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0308814608009187)
  24. Artés-Hernández F, Robles PA, Gómez PA, Tomás-Callejas A, Artés F. Low UV-C illumination for keeping overall quality of fresh-cut watermelon. Postharvest Biol Tec. 2010;55:114–120. (https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0925521409001975)
  25. Choudhary R, Bowser TJ, Weckler P, Maness NO, McGlynn W. Rapid estimation of lycopene concentration in watermelon and tomato puree by fiber optic visible reflectance spectroscopy. Postharvest Biol Technol. 2009;52:103–109.(https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0925521408002822)
  26.  Tadmor Y, King S, Levi A, Davis A, Meir A, Wasserman B, et al. Comparative fruit colouration in watermelon and tomato. Food Res Int. 2005;38:837–841.(https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/31263475/)
  27. Micol V, Larson H, Edeas B, Ikeda T. Watermelon extract stimulates antioxidant enzymes and improves glycemic and lipid metabolism. Agro Food Industry Hi-Tech. 2007;18:22–26. (https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/26417290/)
  28. Pennathur S, Maitra D, Byun J, Sliskovic I, Abdulhamid I, Saed GM, et al. Potent antioxidative activity of lycopene: A potential role in scavenging hypochlorous acid. Free Radic Biol Med. 2010;49:205–213. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20388538)
  29. Jaskani MJ, Kwon SW, Kim DH, Abbas H. Seed treatments and orientation affects germination and seedling emergence in tetraploid watermelon. Pak J Bot. 2006;38:89. (https://www.semanticscholar.org/paper/SEED-TREATMENTS-AND-ORIENTATION-AFFECTS-GERMINATION-Jaskani-Kwon/4fce06ff64b0cbad0070419fc88e731f69f1c319)
  30. Saftner R, Luo Y, McEvoy J, Abbott JA, Vinyard B. Quality characteristics of fresh-cut watermelon slices from non-treated and 1-methylcyclopropene-and/or ethylene-treated whole fruit. Postharvest Biol Technol. 2007;44:71–79.(https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0925521406003097)
  31. Mort A, Zheng Y, Qiu F, Nimtz M, Bell-Eunice G. Structure of xylogalacturonan fragments from watermelon cell-wall pectin. Endopolygalacturonase can accommodate a xylosyl residue on the galacturonic acid just following the hydrolysis site. Carbohydr Res. 2008;343:1212–1221. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18394594)
  32. Shi J, Maguer ML. Lycopene in tomatoes: chemical and physical properties affected by food processing. Crit Rev Food Sci Nutr. 2000;40:1–42. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10674200)
  33. Collins JK, Davis AR, Adams A, Perkins-Veazie P. Sensory evaluation of low sugar watermelon by consumers. Hort Sci. 2005;40:883. (https://www.ars.usda.gov/research/publications/publication/?seqNo115=178667)
  34. Davis AR, Webber CL, 3rd, Perkins-Veazie P, Ruso V, Lopez Galarza S, Sakata Y. A review of production systems on watermelon quality. In: Pitrat M, editor. Cucurbitaceae. Proceedings of the IXth EUCARPIA meeting on genetics and breeding of Cucurbitaceae, Avignon (France), May 21-24th. 2008. pp. 515–520.(https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/20103041513)
  35. Jiang XT, Lin DP. Discovery of watermelon gynoecious gene gy. Acta Hortic Sin. 2007;1:027. (https://worldveg.tind.io/record/35526/)
  36. Fish WW, Perkins-Veazie P, Collins JK. A quantitative assay for lycopene that utilizes reduced volumes of organic solvents. J Food Compost Anal. 2002;15:309–317. (https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0889157502910690)
  37. Ollanketo M, Hartonen K, Riekkola ML, Holm Y, Hiltunen R. Supercritical carbon dioxide extraction of lycopene in tomato skins. Euro Food Res Technol. 2001;212:561–565. (https://link.springer.com/article/10.1007/s002170100298)
  38. Klipstein-Grobusch K, Launer L, Geleijnse JM, Boeing H, Hofman A, Witteman JCM. Serum carotenoids and atherosclerosis: the Rotterdam Study. Atherosclerosis. 2000;148:49–56.(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10580170)
  39. Arab L, Steck S. Lycopene and cardiovascular disease. Am J Clin Nutr. 2000;71:1691S–1695S. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10837319)
  40. Chasse GA, Mak ML, Deretey E, Farkas I, Torday LL, Papp JG, et al. An ab initio computational study on selected lycopene isomers. J Mol Struct. 2001;571:27–37. (https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0166128001004249)
  41. Lewinsohn E, Sitrit Y, Bar E, Azulay Y, Ibdah M, Meir A, et al. Not just colors — carotenoid degradation as a link between pigmentation and aroma in tomato and watermelon fruit. Trends Food Sci Technol. 2005;16:407–415. (https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0924224405001536)
  42. Alquézar B, Zacarías L, Rodrigo MJ. Molecular and functional characterization of a novel chromoplast-specific lycopene β-cyclase from Citrus and its relation to lycopene accumulation. J Exp Bot. 2009;60:1783–1797. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19325166)
  43. Mokbe MS, Hashinaga F. Antibacterial and antioxidant activities of banana (Musa, AAA cv. Cavendish) fruits peel. Am J Biochem Biotechnol. 2005;1:125.(достукпно тут: https://d1wqtxts1xzle7.cloudfront.net/58595165/BANANA1-with-cover-page-v2.pdf?Expires=1630055146&Signature=Znc-ZftMZNsP1OmJ1JlbN9gJEhlb83l9UOObQJ7V4wc8P-qf0MDCSijmIutI4e-r1Gnvk-HdSNph9I5DBbpwg5cA0UQu-4-LtNKe-yetchh~VkmMJTfojpboT4mRmazTEUAeIUmZ~xfmSGLtaE7wxB9dORsG3RUQpc19x0JMN7CHorVxbRKs72RHzFHpGvIl1Na7pe7cHaO5Y4YfdFFnDvI5Pv0NyfTwBRAO~J7OiVgJquaEHje~FlGUfhB4LzE988wrx08cjRmSqVenBXc3R0-YpoR8fA53DvKbjyPtzPsCXIPDvpKyVs2yL2dCuMiSSU-MMfYtdTHI64dvtEfHiQ__&Key-Pair-Id=APKAJLOHF5GGSLRBV4ZA)
  44. Oms-Oliu G, Odriozola-Serrano I, Soliva-Fortuny R, Martín-Belloso O. Effects of high-intensity pulsed electric field processing conditions on lycopene, vitamin C and antioxidant capacity of watermelon juice. Food Chem. 2009;115:1312–1319.(https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0308814609000909)
  45. Suliburska J., Bogdanski P., Krejpcio Z., Pupek-Musialik D., Jablecka A. The effects of l-arginine, alone and combined with vitamin C, on mineral status in relation to its antidiabetic, anti-inflammatory, and antioxidant properties in male rats on a high-fat diet. Biol. Trace Elem. Res. 2014;157:67–74. doi: 10.1007/s12011-013-9867-5.(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24293384)
  46. Alam M.A., Kauter K., Withers K., Sernia C., Brown L. Chronic l-arginine treatment improves metabolic, cardiovascular and liver complications in diet-induced obesity in rats. Food Funct. 2013;4:83–91. doi: 10.1039/C2FO30096F. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23010865)
  47. Evans R.W., Fernstrom J.D., Thompson J., Morris S.M., Jr., Kuller L.H. Biochemical responses of healthy subjects during dietary supplementation with l-arginine. J. Nutr. Biochem. 2004;15:534–539. doi: 10.1016/j.jnutbio.2004.03.005.(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15350985)
  48. Wu G., Meininger C.J. Arginine nutrition and cardiovascular function. J. Nutr. 2000;130:2626–2629. doi: 10.1093/jn/130.11.2626. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11053497)
  49. Hong M.Y., Hartig N., Kaufman K., Hooshmand S., Figueroa A., Kern M. Watermelon consumption improves inflammation and antioxidant capacity in rats fed an atherogenic diet. Nutr. Res. 2015;35:251–258. doi: 10.1016/j.nutres.2014.12.005. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25631716)
  50. Jobgen W.S., Fried S.K., Fu W.J., Meininger C.J., Wu G. Regulatory role for the arginine–nitric oxide pathway in metabolism of energy substrates. J. Nutr. Biochem. 2006;17:571–588. doi: 10.1016/j.jnutbio.2005.12.001. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16524713)
  51. Jobgen W., Fu W.J., Gao H., Li P., Meininger C.J., Smith S.B., Spencer T.E., Wu G. High fat feeding and dietary l-arginine supplementation differentially regulate gene expression in rat white adipose tissue. Amino Acids. 2009;37:187–198. doi: 10.1007/s00726-009-0246-7. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19212806)
  52. Jensen-Urstad A.P., Semenkovich C.F. Fatty acid synthase and liver triglyceride metabolism: Housekeeper or messenger? Biochim. Biophys. Acta Mol. Cell Biol. Lipids. 2012;1821:747–753. doi: 10.1016/j.bbalip.2011.09.017.(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22009142)
  53. Baenke F., Peck B., Miess H., Schulze A. Hooked on fat: The role of lipid synthesis in cancer metabolism and tumour development. Dis. Models Mech. 2013;6:1353–1363. doi: 10.1242/dmm.011338. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24203995)
  54.  Iantorno M., Campia U., Di Daniele N., Nistico S., Forleo G.B., Cardillo C., Tesauro M. Obesity, inflammation and endothelial dysfunction. J. Biol. Regul. Homeost. Agents. 2014;28:169–176. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25001649)
  55. Zaiss A.K., Zuber J., Chu C., Machado H.B., Jiao J., Catapang A.B., Ishikawa T.O., Gil J.S., Lowe S.W., Herschman H.R. Reversible suppression of cyclooxygenase 2 (COX-2) expression in vivo by inducible RNA interference. PLoS ONE. 2014;9:e101263. doi: 10.1371/journal.pone.0101263. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24988319)
  56. Hong M.Y., Tseng Y.T., Kalaba M., Beidler J. Effects of watermelon powder supplementation on colitis in high-fat diet-fed and dextran sodium sulfate-treated rats. J. Funct. Foods. 2019;54:520–528. doi: 10.1016/j.jff.2019.02.005. (https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S1756464619300647)
  57. Shanely R.A., Zwetsloot J.J., Jurrissen T.J., Hannan L.C., Zwetsloot K.A., Needle A.R., Bishop A.E., Wu G., Perkins-Veazie P. Daily watermelon consumption decreases plasma sVCAM-1 levels in overweight and obese postmenopausal women. Nutr. Res. 2020;76:9–19. doi: 10.1016/j.nutres.2020.02.005.(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/32142970)
  58. Connolly M., Lum T., Marx A., Hooshmand S., Kern M., Liu C., Hong M.Y. Effect of Fresh Watermelon Consumption on Risk Factors for Cardiovascular Disease in Overweight and Obese Adults (P06-102-19) Curr. Dev. Nutr. 2019;3 doi: 10.1093/cdn/nzz031.P06-102-19. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/labs/pmc/articles/PMC6574932/)
  59. Center for Disease Control and Prevention . National Diabetes Statistics Report. Centers for disease control and prevention, US Department of Health and Human Services; Atlanta, GA, USA: 2020. (https://www.cdc.gov/diabetes/data/statistics-report/index.html?CDC_AA_refVal=https%3A%2F%2Fwww.cdc.gov%2Fdiabetes%2Fdata%2Fstatistics%2Fstatistics-report.html)
  60. Johnson J.A., Pohar S.L., Majumdar S.R. Health care use and costs in the decade after identification of type 1 and type 2 diabetes: A population-based study. Diabetes Care. 2006;29:2403–2408. doi: 10.2337/dc06-0735. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17065675)
  61. Kahn R., Buse J., Ferrannini E., Stern M. The metabolic syndrome: Time for a critical appraisal. Diabetologia. 2005;148:1684–1699. doi: 10.1007/s00125-005-1876-2.(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16079964)
  62. Inzucchi S.E., Matthews D.R., Buse J.B., Diamant M., Ferrannini E., Nauck M., Peters A.L., Tsapas A., Wender R., Matthews D.R. Response to Comments on Inzucchi et al. Management of Hyperglycemia in Type 2 Diabetes, 2015: A Patient-Centered Approach. Update to a Position Statement of the American Diabetes Association and the European Association for the Study of Diabetes. Diabetes Care. 2005;28:2289–2304. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25538310)
  63. Marliss E.B., Chevalier S., Gougeon R., Morais J.A., Lamarche M., Adegoke O.A., Wu G. Elevations of plasma methylarginines in obesity and ageing are related to insulin sensitivity and rates of protein turnover. Diabetologia. 2006;49:351–359. doi: 10.1007/s00125-005-0066-6.(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16369774)
  64. Pieper G.M. Review of alterations in endothelial nitric oxide production in diabetes: Protective role of arginine on endothelial dysfunction. Hypertension. 1998;31:1047–1060. doi: 10.1161/01.HYP.31.5.1047. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/9576113)
  65.  Jobgen W.S., Fried S.K., Fu W.J., Meininger C.J., Wu G. Regulatory role for the arginine–nitric oxide pathway in metabolism of energy substrates. J. Nutr. Biochem. 2006;17:571–588. doi: 10.1016/j.jnutbio.2005.12.001. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16524713)
  66. Míguez L., Marino G., Rodriguez B., Taboada C. Effects of dietary l-arginine supplementation on serum lipids and intestinal enzyme activities in diabetic rats. J. Physiol. Biochem. 2004;60:31–37. doi: 10.1007/BF03168218. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15352382)
  67. Mendez J.D., Balderas F. Regulation of hyperglycemia and dyslipidemia by exogenous l-arginine in diabetic rats. Biochimie. 2001;83:453–458. doi: 10.1016/S0300-9084(00)01192-5. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11368855)
  68. Kohli R., Meininger C.J., Haynes T.E., Yan W., Self J.T., Wu G. Dietary l-arginine supplementation enhances endothelial nitric oxide synthesis in streptozotocin-induced diabetic rats. J. Nutr. 2004;134:600–608. doi: 10.1093/jn/134.3.600. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/14988454)
  69. Wan X., Liu W., Yan Z., Zhao S., He N., Liu P. Changes of the contents of functional substances including lycopene, citrulline and ascorbic acid during watermelon fruits development. Sci. Agric. Sin. 2011;44:2738–2747. (https://www.cabdirect.org/cabdirect/abstract/20113273043)
  70. Fu W.J., Haynes T.E., Kohli R., Hu J., Shi W., Spencer T.E., Carroll R.J., Meininger C.J., Wu G. Dietary l-arginine supplementation reduces fat mass in Zucker diabetic fatty rats. J. Nutr. 2005;135:714–721. doi: 10.1093/jn/135.4.714. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15795423)
  71. Popov D., Costache G., Georgescu A., Enache M. Beneficial effects of l-arginine supplementation in experimental hyperlipemia-hyperglycemia in the hamster. Cell Tissue Res. 2002;308:109–120. doi: 10.1007/s00441-001-0509-4.(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12012211)
  72. Creager M.A., Gallagher S.J., Girerd X.J., Coleman S.M., Dzau V.J., Cooke J.P. l-arginine improves endothelium-dependent vasodilation in hypercholesterolemic humans. J. Clin. Investig. 1992;90:1248–1253. doi: 10.1172/JCI115987. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1401062)
  73.  Wu G., Collins J.K., Perkins-Veazie P., Siddiq M., Dolan K.D., Kelly K.A., Heaps C.L., Meininger C.J. Dietary supplementation with watermelon pomace juice enhances arginine availability and ameliorates the metabolic syndrome in Zucker diabetic fatty rats. J. Nutr. 2007;137:2680–2685. doi: 10.1093/jn/137.12.2680. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18029483)
  74. Lum T., Connolly M., Marx A., Beidler J., Hooshmand S., Kern M., Liu C., Hong M.Y. Effects of fresh watermelon consumption on the acute satiety response and cardiometabolic risk factors in overweight and obese adults. Nutrients. 2019;11:595. doi: 10.3390/nu11030595. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/30870970)
  75.  Figueroa A., Sanchez-Gonzalez M.A., Perkins-Veazie P.M., Arjmandi B.H. Effects of watermelon supplementation on aortic blood pressure and wave reflection in individuals with prehypertension: A pilot study. Am. J. Hypertens. 2011;24:40–44. doi: 10.1038/ajh.2010.142. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20616787)
  76. Machiels K., Joossens M., Sabino J., De Preter V., Arijs I., Ballet V., Claes K., Verhaegen J., Van Assche G., Rutgeerts P.J., et al. 187 Bacterial Dysbiosis in Ulcerative Colitis Patients Differs From Crohn’s Disease Patients. Gastroenterology. 2012;142:S-46. doi: 10.1016/S0016-5085(12)60176-0. (https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S1756464619300647)
  77. Danese S., Fiocchi C. Ulcerative colitis. N. Engl. J. Med. 2011;365:1713–1725. doi: 10.1056/NEJMra1102942. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22047562)
  78. Clapper M.L., Cooper H.S., Chang W.-C.L. Dextran sulfate sodium-induced colitis-associated neoplasia: A promising model for the development of chemopreventive interventions 1. Acta Pharm. Sin. 2007;28:1450–1459. doi: 10.1111/j.1745-7254.2007.00695.x. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17723178)
  79. Ghosh S., Mitchell R. Impact of inflammatory bowel disease on quality of life: Results of the European Federation of Crohn’s and Ulcerative Colitis Associations (EFCCA) patient survey. J. Crohn’s Colitis. 2007;1:10–20. doi: 10.1016/j.crohns.2007.06.005. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21172179)
  80. Hatoum O.A., Binion D.G., Otterson M.F., Gutterman D.D. Acquired microvascular dysfunction in inflammatory bowel disease: Loss of nitric oxide-mediated vasodilation. Gastroenterology. 2003;125:58–69. doi: 10.1016/S0016-5085(03)00699-1. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12851871)
  81. Hong S.K., Maltz B.E., Coburn L.A., Slaughter J.C., Chaturvedi R., Schwartz D.A., Wilson K.T. Increased serum levels of l-arginine in ulcerative colitis and correlation with disease severity. Inflamm. Bowel Dis. 2010;16:105–111. doi: 10.1002/ibd.21035. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19637336)
  82. Coburn L.A., Horst S.N., Allaman M.M., Brown C.T., Williams C.S., Hodges M.E., Druce J.P., Beaulieu D.B., Schwartz D.A., Wilson K.T. l-arginine availability and metabolism is altered in ulcerative colitis. Inflamm. Bowel Dis. 2016;22:1847–1858. doi: 10.1097/MIB.0000000000000790. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27104830)
  83. Ren W., Yin J., Wu M., Liu G., Yang G., Xion Y., Su D., Wu L., Li T., Chen S., et al. Serum amino acids profile and the beneficial effects of l-arginine or L-glutamine supplementation in dextran sulfate sodium colitis. PLoS ONE. 2014;9:e88335. doi: 10.1371/journal.pone.0088335. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24505477)
  84. Coburn L.A., Gong X., Singh K., Asim M., Scull B.P., Allaman M.M., Williams C.S., Rosen M.J., Washington M.K., Barry D.P., et al. l-arginine supplementation improves responses to injury and inflammation in dextran sulfate sodium colitis. PLoS ONE. 2012;7:e33546. doi: 10.1371/journal.pone.0033546. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22428068)
  85. Ptasinska A., Wang S., Zhang J., Wesley R.A., Danner R.L. Nitric oxide activation of peroxisome proliferator-activated receptor gamma through a p38 MAPK signaling pathway. FASEB J. 2007;21:950–961. doi: 10.1096/fj.06-6822com. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17197391)
  86. Liu Y., Huang J., Hou Y., Zhu H., Zhao S., Ding B., Yin Y., Yi G., Shi J., Fan W. Dietary arginine supplementation alleviates intestinal mucosal disruption induced by Escherichia coli lipopolysaccharide in weaned pigs. Br. J. Nutr. 2008;100:552–560. doi: 10.1017/S0007114508911612. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18275628)
  87. Cai W., Yang T., Liu H., Han L., Zhang K., Hu X., Zhang X., Yin K.J., Gao Y., Bennett M.V., et al. Peroxisome proliferator-activated receptor γ (PPARγ): A master gatekeeper in CNS injury and repair. Prog. Neurobiol. 2018;163:27–58. doi: 10.1016/j.pneurobio.2017.10.002. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/29032144)
  88. Hulit J., Wang C., Li Z., Albanese C., Rao M., Di Vizio D., Shah S., Byers S.W., Mahmood R., Augenlicht L.H., et al. Cyclin D1 genetic heterozygosity regulates colonic epithelial cell differentiation and tumor number in ApcMin mice. Mol. Cell. Biol. 2004;24:7598–7611. doi: 10.1128/MCB.24.17.7598-7611.2004. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15314168)
  89. Roessner A., Kuester D., Malfertheiner P., Schneider-Stock R. Oxidative stress in ulcerative colitis-associated carcinogenesis. Pathol. Res. Pract. 2008;204:511–524. doi: 10.1016/j.prp.2008.04.011. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18571874)
  90. Valavanidis A., Vlachogianni T., Fiotakis C. 8-hydroxy-2′-deoxyguanosine (8-OHdG): A critical biomarker of oxidative stress and carcinogenesis. J. Environ. Sci. Health. 2009;27:120–139. doi: 10.1080/10590500902885684. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19412858)
  91. Yasui M., Kanemaru Y., Kamoshita N., Suzuki T., Arakawa T., Honma M. Tracing the fates of site-specifically introduced DNA adducts in the human genome. DNA Repair. 2014;15:11–20. doi: 10.1016/j.dnarep.2014.01.003. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24559511)
  92. Nahum A., Hirsch K., Danilenko M., Watts C.K., Prall O.W., Levy J., Sharoni Y. Lycopene inhibition of cell cycle progression in breast and endometrial cancer cells is associated with reduction in cyclin D levels and retention of p27 Kip1 in the cyclin E–cdk2 complexes. Oncogene. 2001;20:3428–3436. doi: 10.1038/sj.onc.1204452. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11423993)
  93. Giovannucci E. Tomatoes, tomato-based products, lycopene, and cancer: Review of the epidemiologic literature. J. Natl. Cancer Inst. 1999;91:317–331. doi: 10.1093/jnci/91.4.317. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10050865)
  94. Fesseha M., Hong M.Y. Effects of Watermelon Consumption on Cellular Proliferation, and Apoptosis in Rat Colon (P05-019-19) Curr. Dev. Nutr. 2019;3:3–5. doi: 10.1093/cdn/nzz030.P05-019-19.(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/labs/pmc/articles/PMC6576223/)
  95. Glenn K., Klarich D.S., Kalaba M., Figueroa A., Hooshmand S., Kern M., Hong M.Y. Effects of Watermelon Powder and l-arginine Supplementation on Azoxymethane-Induced Colon Carcinogenesis in Rats. Nutr. Cancer. 2018;70:938–945. doi: 10.1080/01635581.2018.1490782.(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/30207495)
  96. Sueakham T., Chantaramanee C., Iawsipo P. Anti-proliferative effect of Thai watermelon leaf extracts on cervical and breast cancer cells. NU. Int. J. Sci. 2018;15:89–95.(https://www.sci.nu.ac.th/sciencejournal/index.php/journal/article/view/ID347)
  97.  Itoh T., Ono A., Kawaguchi K., Teraoka S., Harada M., Sumi K., Ando M., Tsukamasa Y., Ninomiya M., Koketsu M., et al. Phytol isolated from watermelon (Citrullus lanatus) sprouts induces cell death in human T-lymphoid cell line Jurkat cells via S-phase cell cycle arrest. Food Chem. Toxicol. 2018;115:425–435. doi: 10.1016/j.fct.2018.03.033. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/29608981)
  98. Pagano M., Pepperkok R., Verde F., Ansorge W., Draetta G. Cyclin A is required at two points in the human cell cycle. EMBO J. 1992;11:961–971. doi: 10.1002/j.1460-2075.1992.tb05135.x.(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1312467)
  99. Yam C.H., Fung T.K., Poon R.Y. Cyclin A in cell cycle control and cancer. Cell. Mol. Life Sci. 2002;59:1317–1326. doi: 10.1007/s00018-002-8510-y. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12363035)
  100.  Diehl J.A. Cycling to cancer with cyclin D1. Cancer Biol. Ther. 2002;1:226–231. doi: 10.4161/cbt.72. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12432268)
  101.  Giacinti C., Giordano A. RB and cell cycle progression. Oncogene. 2006;25:5220–5227. doi: 10.1038/sj.onc.1209615. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16936740)
  102. Cuenda A., Rousseau S. p38 MAP-kinases pathway regulation, function and role in human diseases. Biochim. Biophys. Acta Mol. Cell Res. 2007;1773:1358–1375. doi: 10.1016/j.bbamcr.2007.03.010. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17481747)
  103. Maddika S., Ande S.R., Wiechec E., Hansen L.L., Wesselborg S., Los M. Akt-mediated phosphorylation of CDK2 regulates its dual role in cell cycle progression and apoptosis. J. Cell Sci. 2008;121:979–988. doi: 10.1242/jcs.009530. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18354084)
  104. Seifrtova M., Havelek R., Chmelarova M., Cmielova J., Muthna D., Stoklasova A., Zemankova S., Rezacova M. The effect of ATM and ERK1/2 inhibition on mitoxantrone-induced cell death of leukaemic cells. Folia Biol. 2011;57:74–81. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21631964)
  105. Yang T.Y., Chang G.C., Chen K.C., Hung H.W., Hsu K.H., Sheu G.T., Hsu S.L. Sustained activation of ERK and Cdk2/cyclin-A signaling pathway by pemetrexed leading to S-phase arrest and apoptosis in human non-small cell lung cancer A549 cells. Eur. J. pharmacol. 2011;663:17–26. doi: 10.1016/j.ejphar.2011.04.057. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21575631)
  106. Zhang X., Tang N., Hadden T.J., Rishi A.K. Akt, FoxO and regulation of apoptosis. Biochim. Biophys. Acta Mol. Cell Res. 2011;1813:1978–1986. doi: 10.1016/j.bbamcr.2011.03.010. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21440011)
  107. Rastogi N., Gara R.K., Trivedi R., Singh A., Dixit P., Maurya R., Duggal S., Bhatt M.L., Singh S., Mishra D.P. (6)-Gingerolinduced myeloid leukemia cell death is initiated by reactive oxygen species and activation of miR-27b expression. Free Radic. Biol. Med. 2014;68:288–301. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2013.12.016. (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24378438)
Ссылка на основную публикацию